Effect of 17β-estradiol on seedling and callus growth of German chamomile (Matricaria chamomilla L.)

Document Type : Research Paper

Authors

1 Former MSc student of Agricultural Biotechnology, Department of Agronomy and Plant Breeding, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran.

2 Department of Agronomy and Plant Breeding, Faculty of Agriculture and Natural Resources, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran.

10.22034/jppb.2020.13271

Abstract

To study the effect of 17β-estradiol on seedling growth, antioxidant enzyme activity and also, on callus induction from leaf explants of German Chamomile (Matricaria chamomilla L.), an experiment was conducted as a completely randomized design with three replications using MS medium containing different concentrations of 17β-estradiol (0, 0.01, 0.1, 1 and 10 mg/l) alone or in combination with 3 mg/l Benzylaminopurine (BAP) + 0 or 1.5 mg/l 1-naphthalene acetic acid (NAA). The results showed that 17β-estradiol at 0.01 and 0.1 mg/l increased root and shoot length and weight, respectively and at high concentration (10 mg/l) increased peroxidase, polyphenol oxidase and catalase activity of German chamomile seedlings. Also, the callus induction was observed after one to two weeks in all media, but the growth varied depending on the presence or absence of plant growth regulators and different concentrations of 17β-estradiol. Maximum callus weight was obtained in 0.01 mg/l of 17β-estradiol with about three-fold increase in comparison with the control (MS without17β-estradiol). This indicates that the 17-beta-estradiol at lower concentrations (0.01 mg/l) can significantly improve callus growth in the presence of plant growth regulators such as NAA and BAP. The results of this study indicate that using steroidal hormone 17β-estradiol can be used to optimize German chamomile cell growth under in vitro conditions.

Keywords


Article Title [فارسی]

تأثیر 17بتا-استرادیول بر رشد گیاهچه و کالوس در بابونه آلمانی (Matricaria chamomilla L.)

Authors [فارسی]

  • الناز نوذری 1
  • رسول اصغری زکریا 2
  • ناصر زارع 2
1 دانشجوی سابق کارشناسی ارشد بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل.
2 گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل.
Abstract [فارسی]

به منظور بررسی تأثیر 17-β-استرادیول بر رشد گیاهچه، فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدان و همچنین القای کالوس از ریزنمونه برگ گیاه بابونه آلمانی (Matricaria chamomilla L.)، آزمایشی به صورت طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار با استفاده از محیط کشت MS حاوی غلظت‌های مختلف 17-β-استرادیول (0، 0.01، 0.1، 1، و 10 میلی‌گرم در لیتر) به تنهایی یا در ترکیب با 3 میلی‌گرم در لیتر بنزیل‌آمینوپورین (BAP)  به علاوه‌ صفر یا 1.5 میلی‌گرم در لیتر 1-نفتالین استیک اسید (NAA) انجام شد. نتایج نشان داد که 17-β-استرادیول در 0.01 و 0.1 میلی‌گرم در لیتر، به ترتیب طول و وزن ریشه و اندام هوایی را افزایش داد و در غلظت زیاد (10 میلی‌گرم در لیتر) باعث افزایش فعالیت پراکسیداز، پلی فنل اکسیداز و کاتالاز در گیاهچه‌های بابونه آلمانی شد. همچنین، القای کالوس پس از یک تا دو هفته در تمام محیط ها مشاهده شد، ولی رشد آن بسته به وجود یا عدم وجود تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی و غلظت‌های مختلف 17-β-استرادیول متفاوت بود. حداکثر وزن کالوس در 0.01 میلی‌گرم در لیتر 17-β-استرادیول با حدود سه برابر افزایش در مقایسه با شاهد (MS بدون 17-β-استرادیول) به دست آمد. می توان گفت که 17-β-استرادیول در غلظت‌های پایین‌تر (0.01 میلی‌گرم در لیتر) می‌تواند به طور قابل توجهی رشد کالوس را در حضور تنظیم‌کننده‌های رشد گیاه مانند NAA و BAP بهبود بخشد. نتایج این مطالعه نشان می‌دهد که می‌توان از هورمون استروئیدی 17-β-استرادیول برای بهینه‌سازی رشد سلول‌های بابونه آلمان در شرایط درون شیشه‌ای استفاده کرد.

Keywords [فارسی]

  • آنزیم‌های آنتی‌اکسیدان
  • القای کالوس
  • کشت درون‌شیشه‌ای
  • هورمون استروئیدی
Chance B and Maehly AC, 1955. Assay of catalases and peroxidases. Methods in Enzymology 11: 764-755.
Dumlupinar R, Genisel M, Erdal S, Korkut T, Taspinar MS and Taskin M, 2011. Effects of progesterone, β-estradiol and androsterone on the changes of inorganic element content in barley leaves. Biological Trace Element Research 143: 1740-1745.
Erdal S, 2012a. Exogenous mammalian sex hormones mitigate inhibition in growth by enhancing antioxidant activity and synthesis reactions in germinating maize seeds under salt stress. Journal of Science, Food and Agriculture 92: 839-843.
Erdal S, 2012b. Alleviation of salt stress in wheat seedlings by mammalian sex hormones. Journal of Science, Food and Agriculture 92: 1411-1416.
Erdal S, 2012c. Androsterone-induced molecular and physiological changes in maize seedlings in response to chilling stress. Plant Physiology and Biochemistry 57: 1-7.
Erdal S and Dumlupinar R, 2011a. Mammalian sex hormones stimulate antioxidant system and enhance growth of chickpea plants. Acta Physiologiae Plantarum 33: 1011-1017.
Erdal S and Dumlupinar R, 2011b. Exogenously treated mammalian sex hormones affect inorganic constituents of plants. Biological Trace Element Research 143: 500-506.
Fathi S, Kharazmi M and Najafian S, 2019. Effects of salicylic acid foliar application on morpho-physiological traits of purslane (Portulaca olaracea L.) under salinity stress conditions. Journal of Plant Physiology and Breeding 9(2): 1-9.
Fazeli Behgo T and Alizadeh Ajirlo S, 2015. Callus induction and shoot regeneration using indole acetic acid and N-isopentenylamino purine combinations and two types of explant in tomato. Journal of Plant Physiology and Breeding 5(2): 41-50.
Genisel M, Turk H and Erdal S, 2013. Exogenous progesterone application protects chickpea seedlings against chilling-induced oxidative stress. Acta Physiologiae Plantarum 35: 241-251.
Geuns JMC, 1978. Steroid hormones and plant growth and development. Phytochemistry 17: 1-14.
Iino M, Nomura N, Tamaki Y, Yamada Y, Yoneyama K and Takeuchi Y, 2007. Progesterone: its occurrence in plants and involvement in plant growth. Phytochemistry 68: 1664-1673.
Janeczko A, 2012. The presence and activity of progesterone in the plant kingdom. Steroids 77: 169-173.
Janeczko A and Skoczowski A, 2005. Mammalian sex hormones in plants. Folia Histochemistry and Cytochemistry43: 71-79.
Janeczko A and Szybka P, 2001. Induction and proliferation of callus of Polygonatum verticillatum L. Conference materials of the 18th Meeting of the Polish Pharmaceutical Society Pharmacy in the 21st century, 19-22 September, Poznan, Poland, p 536 (In Polish).
Janeczko A, Filek W and Skoczowski A, 2002. Influence of human sex hormones on the growth response of winter wheat immature embryos and callus.Zeszyty Problemowe Postepow Nauk Rolniczych 488: 667-673 (In Polish).
Janik JR and Adler JH, 1984. Estrogen receptors in Gladiolus ovules. Plant Physiology 75(Suppl): 135.
Kar M and Mishra D, 1976. Catalase, peroxidase, and polyphenol oxidase activities during rice leaf senescence. Plant Physiology 57: 315-319.
Khan M, Rozhon W, Unterholzner SJ, Chen T,  Eremina M,  Wurzinger B Bachmair A,  Teige M,  Sieberer T, Isono E and  Poppenberger B, 2014. Interplay between phosphorylation and SUMOylation events determines CESTA protein fate in brassinosteroid signaling. Natural Communication 5: 4687 doi:10.1038/ncomms5687.
Koohi L, Zare N, Asghari Zakaria R and SheikhZadeh-Mosaddegh P, 2014. Effect of plant growth regulators and different explants on tissue culture response and suspension cell cultures of German chamomilla (Matricaria chamomilla L.). Journal of Crop Ecophysiology 8: 203-214 (In Persian with English abstract)
Milanesi L, Monje P and Boland R, 2001. Presence of estrogens and estrogen receptor-like proteins in Solanum glaucophyllum. Biochemical and Biophysical Research Communications 289: 1175-1179.
Murashige T and Skoog F, 1962. A revised method for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 15: 472-497.
Petronilho S, Maraschin M, Coimbra MA and Rocha SM, 2012. In vitro and in vivo studies of natural products: a challenge for their valuation. The case study of chamomile (Matricaria recutita L.). Industrial Crops and Products 40: 1-12.
Pourasadollahi A, Siosemardeh A, Hosseinpanahi F and Sohrabi Y, 2019. Physiological and agro-morphological response of potato to drought stress and hormone application. Journal of Plant Physiology and Breeding 9(1): 47-61.
Shore LS, Kapulnik Y, Ben-Dor B, Fridman Y, Wininger S and Shemesh M, 1992. Effects of estrone and 17β-estradiol on vegetative growth of Medicago sativa. Physiologia Plantarum 84: 217-222.
Simersky R, Novak O, Morris DA, Pouzar V and Strnad M, 2009. Identification and quantification of several mammalian steroid hormones in plants by UPLC-MS/MS. Journal of Plant Growth Regulation28: 125-136.
Simons RG and Grinwich DL, 1989. Immunoreactive detection of four mammalian steroids in plants. Canadian Journal of Botany 67: 288-296.
Sudhakar S, Li Y, Katz MS and Elango N, 2001. Translational regulation is a control point in RUNX2/Cbfa1 gene expression. Biochemical and Biophysical Research Communications 289: 616-622.